对抗海水白点虫最新消息

这篇文章堪称经典！介绍了海水白点的成因，及多种有效的治疗方法。本篇為全文五部曲中的第一部。第二部将详细说明海水白点虫的生命周期、如何辨别是否感染、表列出临床徵状、其适应能力，以及面对白点虫的新挑战及预防方式。(鱼病治疗)                                                                      此篇作者：lammark

第一章 白点病治疗 引言 海水白点虫（Cryptocaryon irritans）向来被认定為是侵袭海水鱼类中，破坏力最强的寄生虫之一(Wright & Colorni, 2002)，其高感染力长期来造成不论是观赏鱼类或食用鱼类的死亡以及饲主的经济损失。尤其在水族箱中因系一封闭环境，更是提供了白点虫一个绝佳的繁殖环境。在一封闭系统中，预估白点虫每6至8天，其数量便可繁殖近10倍之多(Burgess, 1992)。 尽管我们对於此一寄生虫已有相当了解，事实上白点虫目前仍是对於饲养硬骨海水鱼类健康方面的最大威胁之一。此原因有部份便是由於许多海水鱼玩家及销售业者，长期以来对於白点虫的生命周期、传染模式及治疗方式所传递的资讯，事实上并不正确（虽然不是有意的）。本文共分為五篇，目的便在详述白点虫的各方面资讯，希望能藉此导正那些原本错误的认知。 什麼是海水白点虫（Cryptocaryon irritans）？ Cryptocaryon irritans一般被海水鱼业者称為“ICH”或是“白点”，它是一种发现在热带与温带海洋硬骨鱼类身上，附有纤毛的原生寄生虫。此病原体系海水鱼类之专性寄生虫（Iwama, Pickering, Sumpter & Shreck, 1997. Dickerson & Dawe, 1994），亦即因其系依靠鱼类取得食物来源，必须依附在鱼类身上才能成长，因此在其寄生阶段（theront stage）若是无法依附於宿主，此寄生虫将只能存活一至二日。 歷史 1937年，日本人Sikama首次提出关於海水白点虫的报告，起因於这中被称為纤毛寄生体的白点虫，感染了东京帝国大学水產学会水族箱中的45种鱼类。在此之前，此一寄生虫的感染行為仅止於在公立或私人的水族馆中观察（Nigrelli & Ruggieri, 1966. Wilkie & Gordin, 1969）。自此以后，海水白点虫的问题，便开始在海洋生物养殖上逐渐受到重视（Colorni, 1985. Huff & Burns, 1981）。海水白点虫与淡水白点虫有许多相近之处，但事实上他们是属於两种完全不同分类的寄生虫。 近期发展 广泛的系统分析以及分子诊\断方法被使用於海水白点虫的重新归类。近来此一原生体外寄生虫被建议应归入Prostomatea「纲」中的Prorodontida 「目」，且另新增一「科」Cryptocaryonidae做為归类（Wright & Colorni, 2002）。 研究团体近来发现一些令人担忧的新证据，显示出海水白点虫具有适应新环境的能力。他们尝试将白点虫置於数种不具有生存压迫的环境中，迫使白点虫必须不断的适应新环境及变化（Yambot, et al., 2003）。实验结果却因而產生数个新的品种出来（Diggles & Adlard, 1995, 1997 Diggles & Lester, 1996a,b,c. Jee et al., 2000）。同时白点虫也在一些新的地区被发现，这些地区的水温仅有12~16℃，较先前报告中的温度為低（Jee, et al., 2000）。在过去，白点虫被认為无法生存於19℃以下的环境中（Nigrelli & Ruggieri, 1966. Diggles & Lester, 1996b. Gordin, 1969）。而在臺湾属於低盐的环境中，也发现了高度变异的品种已在大量繁殖（Yambot et al., 2003）。由上述新发现我们得知，海水白点虫事实上在不同地理区域、不同水温及不同盐度中都能生存，因此我们必须要有新的策略的疗法来控制它。 迷思与误解 海水玩家普遍存有相同的误解，以為只有健康状况较差的鱼只才容易被白点虫感染。当然，在压迫的环境下，鱼只的免疫功能会降低，使得鱼只在受到感染后，无法產生所需的免疫力。然而压迫的环境或是鱼只健康情形不佳，并非是否会感染白点病的必要因素，即使是健康的鱼只在未受压迫的情形下，若是暴露在白点虫的环境中，仍然狠容易受到感染。值得注意的是，在临床实验中，「紧迫」并非鱼只是否会感染白点病的因素之一。 另一个在海水玩家中普遍存在的误解是认為白点虫在每一个鱼缸中或多或少一定会有，其实他们是误将白点虫视為与缸中普遍存在的细菌或病原体同类，因而假设这些原本已存在的白点虫，在缸子状况不好时（如水质不好或是喂食污染）便会爆发在鱼只身上。抱持这种看法的人通常都忽视了新鱼只在入缸前检疫的重要性，白点病必须由外来鱼只引进，否则无法在鱼缸中发生。一般说来，白点病是藉由已被感染的鱼只所带入的，未针对新进鱼只进行检疫，将大大提高传染的可能性。而由於缸中一般还有活石或软体生物，一旦白点病爆发后将更难处理。 Dr. Harry W. Dickerson在1994年夏季版的Seascope杂志中，针对海水白点虫做了以下论述：「要挽救缸中生物，实际上必须完全消灭所有的寄生虫，治疗才能產生效果」（Dickerson, 1994）「根除海水缸或养殖场白点虫的难题来自於其生命周期的復杂性，特别是有些白点虫在分裂体 Tomonts以及非同步脱离孢囊具传染性的掠食体阶段的潜伏期极长。」（Colorni & Burgess, 1997）但透过有效的治疗与适当的程序，白点病仍可从鱼缸及鱼只身上完全消除。 . 海水白点虫属於专性寄身虫的一种，亦即在找不到宿主的情形下，它便无法完成其生命周期（在营养体阶段）。考虑到白点虫在分裂体Tomonts阶段需要3到28天孵化，因此建议将鱼只清空30天到6周的时间，使缸中找不到宿主，便能将白点虫从缸中完全消灭。并将移至治疗缸的鱼只施以有效的治疗（如使用低比重疗法或下铜药），以消灭鱼只上的白点，可将其治癒。 哪些鱼容易被感染？ 海水白点虫并无特定的宿主选择性（Burgess & Mathews, 1995），这表示了只要暴露在有白点虫的环境中，任何种类的鱼只都可能会被感染。甚至原本并非海水鱼类亦同，海水化的黑茉莉鱼就曾被用来做為试验品，以了解海水白点虫是否需要特定宿主（Yoshinaga & Dickerson, 1994）。此外，在鱼缸或封闭系统中，白点虫繁殖的速度将以倍数激增，使得要对抗它愈来愈困难。鱼缸中之所以较大海中容易传染白点病，系由於鱼缸中的相对高密度养殖，使得白点虫在掠食体Theronts阶段容易找到宿主（Yambot, et al., 2003）。 狠明显的，不同种的礁巖鱼类对於白点病有不同程度的抵抗力（Colorni & Burgess, 1997. Diggles & Lester, 1996c），在封闭的环境中，其抵抗力因素可能远比不同鱼种对食物或环境需求等种种因素要来得重要。一般来说，神仙类、倒吊类、鰈类或箱魨科鱼类，通常被认為较容易感染白点病，而板鳃类例如鯊鱼或是魟鱼等，则天生对白点病具有抵抗力（Lom, 1984）。 传染模式 海水白点病通常起因於鱼缸中所加入的新鱼只原本就已经受到感染（Dickerson & Dawe, 1995），已受感染的鱼只通常在身体上会发现有白点或是伤口，也可能因為病原体仍在营养体Trophonts阶段，宿於鳃膜中而无法从外观察觉。 虽然并不常见，但白点病也可能是藉由其他管道进入鱼缸中，例如所置换的海水中存有正处於游离阶段的白点虫掠食体（Theront）。然而，由於孵化出来的掠食体Theront能单独存活的时间极短，因此藉由这个管道导致感染的机会其实并不高，只要将海水静置24小时后再使用，基本上便可免除这个可能性（Colorni & Burgess, 1997）。任何表面坚硬的物体，如砂子、石头、玻璃、缸中设备，甚至无脊椎生物（虽然他们不会感染白点病），都可让白点虫在分裂体Tomonts阶段做為着床物（Burgess, 1992），所以假若你将这些物体移到另一个乾凈的缸中，则分裂体Tomonts或囊胞也会有可能被带入。同时，使用海水活体喂食时，理论上也可能因此带入白点虫。 风乾鱼缸、砂子、石头与设备可以除去附着在上面的分裂体Tomonts，但狠显然的，这个方法并不适用在活石上。倘若取得软体、活石或活砂的来源处已被感染白点病，那麼最好还是先经过检疫的程序后再移入缸中。 致死的原因 在一重度感染的封闭环境中，海水白点虫可引发鱼只的大量死亡（Yoshinaga & Dickerson, 1994）。海水白点虫会引发之主要病变，称為白点病；其次还有某种细菌或真菌的感染，通常也与白点虫有关。海水白点虫会导致宿主因窒息、渗透不平衡（指细胞膜内外液体压力不平衡）以及继发性细菌感染而死亡。 白点病会使得鱼只鳃膜產生上皮细胞肥大的徵状以及细胞次胶层的融化（Yambot, et al., 2003），若是攻击鱼只的白点虫数量足够，在受到感染的初期，肉眼可视鱼只有白点產生，而鱼鳃上皮将会严重受损（Dickerson & Dawe, 1994）；若是病状严重或遭受重復感染，将严重导致细胞次胶层融化及各薄膜间空间不可逆的闭合 （Colorni & Burgess, 1997）。受掠食体（Theronts）侵袭所造成的伤口经常会成為再次為伺机性细菌或是真菌病原体感染的途径（Colorni & Burgess, 1997），这些伤口也特别容易為假单胞类细菌感染而引发并发癥（Nigrelli & Ruggieri, 1966）。同时这些伤口也会危急鱼只黏液/鳞片/表皮间的平衡，使得渗压功能无法正常作用及更為耗费鱼只的体力，对严重感染的鱼只而言，更可能造成渗透压的剧烈改变。一般说来，鱼只仅在遭受连续性严重感染后，才会导致死亡（Colorni, 1992）。

第二章

本篇是為关於海水型白点虫 (亦称為 “盐水型白点虫saltwater ich.”)的五篇系列文章中的第二章. 第一章的部份包含了关於海水型白点虫的介绍, 以及其歷史, 还有相关的研究发展. 也介绍了许多对於白点虫的迷思及误解: 什麼样的鱼种易受感染, 感染模式及致死的原因. 本章将会继续接着介绍海水型白点虫的生命周期, 如何辨认海水型白点虫, 感染的临床癥状, 适应变异的能力, 新的挑战及预防的方法

生命周期
海水型白点虫的生命周期可区分為明确的四个型态(Colorni & Burgess, 1997). 海水型白点虫并不像其他鱼类寄生虫般的需要中间宿主(例如: 蜗牛等). 四个型态的生活周期主要可以区分為寄生期及脱离宿主后两大阶段. 这四个型态是為掠食体 theront, 原分裂前体protomont,分裂体 tomont 及 营养体trophont. 海水型白点虫的生命周期在温度為24-27C 的情况下, 通常大约是在1到2周左右(Colorni, 1992). 生命周期的长度会因為变异种或特有种而有些微的差异(Colorni & Burgess, 1997). 到至今有纪录的文件中并未发现在其生命周期中有任何休眠状态的存在. 然而, 海水型白点虫分裂体tomonts 所需要的孵化时间约為 3 到 28 天(Colorni, 1985). 在纪录中 分裂体tomonts 孵化所需的最长时间為 72 天(Colorni & Burgess, 1997). 然而海水
型白点虫的生命周期与温度是有相关联的, 所以这样长的孵化时间并不可能存在於热带鱼缸中的.

白点病治疗




PS.这是热心的Brick版主提供自己精心制作的生命史图解图片

通常当鱼身上被用来当為癥状指标的白点短暂退去的时候, 鱼友常误以為白点感染已经治癒. 事实上, 在白点虫的生命周期里, 当 营养体Trophonts 成熟后, 便会离开宿主进入所谓分裂体 tomonts 繁殖的阶段. 一般来说, 白点的消失只是短暂的, 通常几天过后, 会有更多白点出现.
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营养体Trophont 或寄生摄食阶段
鱼友通常最熟悉的便是海水型白点虫的营养体 trophont 型态. 白点虫的摄食型态乃是以类似盐粒般的白点出现在鱼的身上. 营养体Trophonts 会持续性的依附在宿主身上的体表或上皮组织中. 并摄食宿主鱼身上的体液, 组织碎片, 或体表细胞(Colorni & Burgess, 1997). 并靠着从宿主身上摄食来的营养成长, 逐渐成為以肉眼便可辨识的白点. 通常会在 3 到 7 天里完全成熟并离开宿主, 平均时间多為 4 到 5 天内(Colorni & Diamant, 1993. Colorni, 1985). 在同一宿主鱼身上的成熟的营养体 trophonts 通常会在 16-18小时 的短时间内离开宿主. 如果宿主鱼死亡, 营养体trophonts 也会离开宿主鱼(Dickerson & Dawe, 1994) 若因宿主死亡而被迫在成熟前便离开宿主的营养体 trophonts, 虽然也能够產生分裂体 tomonts, 但这些分裂体 tomonts 常常因為不够成熟而无法產生可存活的掠食体theronts.
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原分裂前体Protomont 或离开宿主后且未形成胞囊前
营养体Trophonts 在成熟后便会离开宿主, 并退去身上的纤毛. 这就是所谓的原分裂前体 protomont 阶段. 原分裂前体Protomonts 通常会於清晨五点左右或清晨前夕离开宿主鱼(Burgess & Mathews, 1994b). 至於营养体Trophonts 是否利用清晨前的短暂黑暗时间离开宿主, 以减低被攻击风险的生存策略, 在学说理论上尚未被确立. 这样的时间点狠可能只是巧合. 脱离宿主后的 2 到 8 小时,原分裂前体 Protomonts 会在底沙或活石上移动, 直到黏附在适当的地方.

分裂体Tomont 或繁殖阶段
原分裂前体Protomonts 会先吸附在鱼缸中的底砂, 活石, 或其他适合的硬质表面上, 然后开始形成胞囊状的分裂体 tomonts(Colorni, 1985). 这是所谓的繁殖阶段. 在接下来的 8 到 12 小时, 分裂体Tomonts 会在体内开始形成一些子细胞, 也就是仔体 tomites. 每一个分裂体 tomont 所能產生的仔体 tomites 数量, 会因品种的不同而有所差异, 某些品种所能產生的 仔体 tomites 可能小於 200 个, 而有些品种则可能多达上千个(Diggles & Adlard, 1997). 当孕育成熟后, 分裂体tomonts 会开始孵化并将仔体 tomites 释放到海水中. 这时被孵化出来的都是具备游泳能力的单一个体, 称之為掠食体 theronts.


分裂体Tomonts 孵化所需的时间会因某些因素的影响而產生极大的差异, 可能从最短的 3 天到最长的72 天左右(Noga, 2000). 海水型白点虫的生命周期与温度有狠大的相关性, 所以像 72 天这样长的孵化时间基本上说来是非常不寻常的, 且只可能发生在温度较低的环境中. 在适合珊瑚生长的温度下,分裂体 tomonts 孵化的时间约為 3 到 28 天, 平均高峰集中在 4 到 8 天(Colorni, 1985). 这些差异的存在或许是海水型白点虫所演化出来的生存策略. 然而, 在 tomont 型态下两星期后,分裂体 tomont 所能產生的t掠食体heronts 不仅在数量上明显的减少, 且孵化出来的 掠食体theronts 在感染能力上也大幅的衰减(Colorni, 1992).

Theront 掠食体或具感染性的浮游阶段
在海水型白点虫生命周期中具传染性的浮游阶段称之為掠食体 theront. 在不同的研究报告中指出, 从分裂体 tomont 孵化出来后的 12 到 48 小时间, 掠食体Theronts 是存活在水中的(Burgess & Matthews, 1994a.Yoshinaga & Dickerson, 1994. Colorni, 1985). 掠食体Theronts 必须在这段时间内找到适合的宿主, 否则便会死亡, 温度, 比重(盐度), 或特有种的差异可以解释寻求宿主时间上的差异.


掠食体Theronts 孵化的时间, 一致性的都维持在清晨两点到九点之间(Yoshinaga & Dickerson, 1994). 从分裂体 tomont 阶段到掠食体theront 阶段的生理变化周期与光线虽然并没有关系, 但这也是尚未被解释说明的. 在从 分裂体tomont 阶段孵化之后, 掠食体Theronts 便快速的失去感染的能力. 6 到 8 小时候后的感染能力便变的狠低(Burgess, 1992). 孵化后的 7.5 小时, 87%的掠食体 theronts 仍然存活. 经过11.5 小时后, 存活率便只剩下 9%. 孵化后的15.5 小时, 更只剩下 0.34%. (Yoshinaga & Dickerson, 1994). 掠食体Theronts 的大小会因為白点虫品种的不同, 地理上的分布, 宿主的品种差异, 以及水温的变异而有所不同(Colorni & Burgess, 1997). 在 掠食体theront 接触到宿主之后, 开始附着的阶段称之為原营养前体proront.原营养前体 Proronts 在附着之后会开始鉆进宿主鱼的上皮组织, 这些伤口在短时间(可能只要五分鐘)内便会快速的恢復, 并覆盖住原营养前体 Proronts (Colorni & Burgess, 1997). 然后 原营养前体Proronts 便快速的转化成营养体 trophonts, 展开寄生摄食的阶段.


唯一能够确认感染海水型白点虫的方法是用显微镜来观察新鲜鱼鳃, 鱼鰭的切片或从皮肤取得的抹片上, 是否有持续旋转动作, 梨形的纤毛虫(营养体trophonts)的存在(Colorni & Burgess, 1997). 然而对鱼友而言, 如果对於自己所饲养鱼只的外表及日常行為有深切的了解时, 便能藉由观察一些容易辨识的临床癥状来确认是否感染白点虫.

- 可能的临床癥状列表
- 出现针头或句点般大小的白点, 一开始会出现在皮肤或鱼鰭上, 然后出现在眼睛的部位
-通常一些鱼直到疾病已经发展才会显露出受到疾病的侵袭,但不是全部
- 分泌黏液增加
- 在感染初期, 会有过动的行為
- 在鱼缸中有磨擦抓痒, 冲撞的行為
- 有震颤, 抽搐, 痉挛的状况
- 寻找遮蔽物, 或躲藏的行為
- 出现的白点会在消失数天后再次出现
- 除感染早期之外, 会出现呼吸急促的癥状
- 蒙眼癥状產生并伴随着细菌感染
- 鱼体出现退色的情况
- 在感染后期, 出现烂鰭或其他细菌感染癥状
- 皮肤出现因细菌感染所引起溃烂脱色的情况
- 停留在靠近水面或水流强劲的区域
- 缺乏食慾
- 感染后期, 出现脱水及体重急速下降的癥状


海水型白点虫的适应能力
在经过几个世代演化后的分裂体 tomonts 身上, 发现了一些成熟个体特徵的变异. 这些变异的特徵包含分裂体 tomonts 从单一生存的个体, 演进成群聚化.分裂体 Tomonts 也从没有或微弱黏着性演变成具有黏着性 (Yambot, et al., 2003). 依据报导指出, 有一种海水型白点虫冷水变异种, 会藉由出芽繁殖来產生子代的分裂体 tomonts (Jee, et al., 2000). 另外, 在上皮组织中的微小管道中也发现了具有微弱黏着性的 tomonts (Diamant, et al., 1991).


在臺湾及其他地区, 已经确认数种新品系的海水型白点虫的存在(Burgess & Mathews, 1995. Diggles and Adlard,1997).
其中在嘉义及高雄所发现具有高度变异性的特殊种特别的引人注目. (Yambot, et al., 2003) 嘉义特有种是在一个比重(盐度)只有 5ppt 的小池塘中所发现的. 这是在有纪录的文件中, 第一次在这样低的比重(盐度)中发现海水型白点虫. 高雄特有种则是从一个比重(盐度)為10 ppt 的洞穴中所发现的分裂体 tomonts 的第 12 个世代所取得的(Yambot, et al., 2003). Diggles and Lester, (1996a) 提出海水型白点虫的分布范围已经扩散分布到淡水出海口的区域.


新的挑战
海水型白点虫在地理, 温度以及盐度范围上的分布已经令人忧心的愈来愈广大, 且臺湾特有种也相对的显现出海水型白点虫在物种上的多样性演化(Diggles & Adlard, 1997. Yambot, et al., 2003) 这些报告让我们了解到, 实际上海水型白点虫是有足够的适应能力来面对并适应新环境的变异. 更让我们了解到要能有效的控制海水型白点虫病, 新的策略及治疗方式是必要的. 就以往的文献海水型白点虫 各品系 在低比重(盐度)的治疗方式下, 能够有效的消灭(Colorni, 1987. Rigos et al., 2001).

预防措施
相对於治疗被感染的鱼只而言, 事前的预防措施是為较有效及较佳的处理方式. 对所有新进鱼只进行為期至少叁周的隔离检疫, 将能大幅度的预防主缸中海水型白点虫病的爆发. 六周以上的隔离检疫期对於主缸则有更佳的安全保障. 严格的预防措施以及适当的检疫步骤是维持鱼缸免於海水型白点虫病的感染最佳方法(Colorni & Burgess, 1997).
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如果鱼只能经由隔离检疫的过程来观察其是否有染病的情况, 不仅能让染病鱼只的治疗更形简单, 也相对降低了主缸中已完成检疫治疗鱼群的染病风险. 在初期检疫的过程中, 可以对鱼只施与低比重(盐度)的治疗方式. 这样的处理将巨幅的降低将寄生虫导入主缸的风险. 当主缸中的鱼只因感染海水型白点虫而需被移出主缸进行检疫治疗时, 主缸应采取鱼只凈空的动作(主缸内所有的鱼只都须被移出, 无脊椎动物除外), 為期至少 30 天. 这样的作法是為了要让主缸中的寄生虫因為没有宿主的存在而无法存活. 一般说来, 30 天的主缸凈空期已是足够, 然而, 更长的凈空时间会有更佳的效果, 也相对增加主缸的安全性.

第叁章的内容将介绍少数几种可靠的根绝海水型白点虫的治疗方法以及一些实验性的的治疗处置方式

第叁章


这是五份系列中的第叁份。第二部分包括生命周期, 怎麼辨认白点虫( Cryptocaryon irritans)、这寄生生物的癥状, 伸缩性, 新的挑战以及预防。第叁部分则继续通过部分包括根除\"白点病\" 和一些可持续并有效控制病情的实验性疗法。


有限并可靠的疗法
是有许多被声称能治疗白点虫的方式。不幸地, 多数这些方法或疗法只是部份能达到有效疗效。目前只有叁种方法被证明可靠的治疗方法。这些包括铜基疗法、盐度操作(即hyposalinity) 并且病体移动法。不过就算是最佳的治疗方式也是会有其限制及缺点。


铜治疗
铜疗法是与白点虫交战最源远流长的手段(Cardeilhac & Whitaker 1988) 。但是,对无脊椎、微动物和微植物群来说, 铜是致命的。铜可藉由钙、镁和有机物将其从水中移除。


铜基化合物的疗程(一些包含其它化学制品与铜的组合) 应该只使用於不包含无脊椎、活石、活砂或其它钙质材料的水族缸内。


铜会压抑免疫作用和造成鱼体的紧迫。铜对鱼体来说也是属於剧毒, 但没有比无脊椎动物来的严重。超出规定太高的剂量也许会杀害病鱼。但如果铜浓度不足则治疗将会无效。这需要每日测试铜浓度两次以及依必要做调整。

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当使用任何一种铜基化合物的疗程时请仔细阅读说明书上指示的剂量。不同的產品有不一样的指示剂量。每日测试铜浓度两次并準确地操作铜浓度测试工具。使用任一个铜基化合物时不正确剂量疗程的结果可能是危险并致命的。铜的螯合物需要较高剂量而且他们与非螯合物的铜基化合物相比来说一般较不有效。治疗时铜浓度应该在叁个星期内连续被维持在有效浓度最低限度值。


我亲自使用了Cupramine 一种Seachem 的產品、多次在\"铜敏感鱼类\" 如狮子鱼, 河豚、小型神仙和麒麟鱼(青蛙)Madarin中达到令人印象深刻的结果。以我的经验, 它比其它铜基药品更有效且容忍度更高。Seachem 建议正确剂量為5ppm Cupramine 。但是我在4ppm的浓度时就达到了有效疗效。


Hyposalinity 疗法
Hyposalinity 疗法有许多铜基疗法达不到的好处(Bartelme, 2001.c) 。这个方法不会压抑免疫作用如降低白血球的活动力。抗生素可以在使用hyposalinity 疗法时一起使用。 一些抗菌素更有效，或者当盐分少於自然的海水的时，更低的剂量必要的。管理治疗时盐度只需要一天检查一次。化学过滤器如活性碳和化学吸附过滤棉能与hyposalinity 疗法合并使用。


準确的测量盐度是 hyposalinity疗程中的关键。摇臂式液体比重计是广為人知的不精确。折射计, 或实验室等级, 大型玻璃液体比重计是会比较被推荐的测量仪器。在被稀释的海水中碱度和酸碱度的值通常会下滑。每日都要检查这些数值并且在必要时增加缓冲剂并维护维护酸碱度在8.1 和8.3 之间。不要在同时在有板鳃类鱼类, 无脊椎, 活巖石, 或活砂的环境里使用hyposalinity 治疗法。对於生化过滤上的细菌来说只要盐度不要降的过快就会是安全的。每天换两次水并连续换两天, 每次换水降低盐度约 5 ppt。

主张盐分在16ppt或更少已经证明是对海水白点虫的一种非常有效的处理方法 (Bartelme, 2001a, b) 。但是, 当对白点虫来说已经习惯低盐度并且开始生长及扩散时治疗结果就会有变化。治疗的整个期间盐度 必须一致地被维护在16ppt 以下。我建,,,议维持在14ppt 可以在治疗期间提供一些错误的空间。


在一个治疗盐分水平被到达了之后疗程应该持续至少叁个星期。不同於大多数其他治疗白点虫的方法, hyposalinity 不针对海水白点虫\"浮游期\" 或掠食体阶段。Hyposalinity 疗法為中断或干扰分裂体阶段tomont stage的生命周期。分裂体被低比重条件毁坏, 如此便可防止再感染。


珊瑚礁硬骨鱼类表现出可以良好的适应hyposalinity 状态。Hyposalinity 同时也被以色列海洋学家Angelo Colorni和Limnological 有限公司1985 年(Colorni 1985)作為一种cryptocaryonosis海水白点虫有效的疗程而被研究。一个发表在Drum and Croaker的报告中指出: \"我们现在有经验来证明各种各样的硬骨鱼类能相当舒适地能活在盐度(1.010) 至少2 个到3 个月的期间(Goodlett & Ichinotsubo 1997) 。盖刺鱼科皇后神仙是其中一项这样的研究主题。他们被保留在低盐度如7ppt 30 天结果没有任何明显的病徵(Woo & Chung, 1995) 。


一种 hyposalinity 的交错疗法
在对鱼以一系列的短期低盐浴在盐度8 到10ppt 将有效地杀死海水白点虫分裂体。这个疗程需要每叁天低盐浴叁个小时并且重復疗程四次。所有休眠体暴露於10ppt 盐度的水中叁小时将会造成破坏(Colorni 1985) 。如果感染是由低盐度变异体白点虫造成的,如嘉义的特有种,则盐度8 到10ppt 将无法有效地根除寄生生物。


每叁天处理由於疾病而衰弱的鱼体也会是危险的(Colorni 1985) 。珊瑚礁硬骨鱼类体内盐度约是11 到12ppt 。这是相当值得怀疑是否珊瑚礁硬骨鱼类可能毫无过度紧迫的去容忍低於他们体液的外在盐度水平。理论上, 在海鱼越过相等的的摩尔浓度时离子和渗透压调整过程的方向会是相反的(Evans 1984) 。但是, 最近研究发现至少部份海洋硬骨鱼类是能适应那些比他们体液更低的外在盐度(Woo & Chung, 1995)。


病体移动法
病体移动法包括移动鱼每叁天移动病鱼於两水族箱之间一次并共计四次的调动方法。使用之间需要把水族箱烘乾以杀除剩余的分裂体tomonts. (Noga 2000 年。Colorni, 1985) 。这有效地将影响这些寄生生物的生命周期。然而, 频繁的移动和潜在的伤害必须考虑到会威胁到病鱼的健康(Noga 2000) 。

实验处理方法
控制海水白点虫的新化学制品和控制的方法 持续的被研究。 以下的两种处理方法被作為例子提出并且没被当成為一个全面的清单。


脂肪酸的有效率用来预防海水白点虫 曾经使用真鯛来检验(Hirazawa, 等, 2001) 。辛酸被发现有最强的抗寄身虫作用。鱼以体重75mg/kg 的比率每天喂食辛酸。结果表明在鱼的身上营养体的数量减少, 辛酸有一种抗寄身虫的作用对抗海水白点虫。但是, 尽管海水白点虫的数量被减少, 所有测试对象还是由於传染死亡了。

食品和药品管理局(食品及药品管理局) 已经把过氧化氢归类為低的规章的优先权(LRP) 药用作鱼和鱼蛋上细菌的控制。 过氧化氢已经被实验上证明有效对抗卵圆鞭毛虫这种海鱼体外寄身虫。对待受卵圆鞭毛虫感染的太平洋Threadfin六丝马?用25ppm的剂量药浴30 分鐘 (蒙哥马利et al.，1999 b) . 一些种类的鱼可以良好的忍受这种治疗，但是其它鱼类对这种化学物非常敏感(Noga，2000) . 治疗结果也可能在幼鱼或者成鱼有所不同。


过氧化氢预防其他体外寄生虫是有效的， 例如舌杯虫Ambiphrya和叁代虫Gyrodactylus spp。。 (Rach等等 2000). 当被在水里溶解时，过碳酸钠是释放过氧化氢的一种化合物。 过碳酸钠被证明杀死淡水的体外寄身虫淡水型白点虫掠食体或浮游期阶段(Buchmann，et al.，2002) . 它目前在丹麦被用在彩虹鱒鱼在 在50-100毫克/ L 的浓度下每周两次且对鱼没有任何明显的不良影响。


如果超过50% 掠食体死在这种过氧化氢的浓度则可被记录
為有效. 12.5mg/ L的剂量在温度12°C在3个小时之内杀害掠食体。这种同样剂量不是有效的对抗淡水白点虫的营养体阶段。不过，12.5毫克/ L 的剂量药浴180分和62.5毫克/ L 药浴90分能有效的对抗掠食体 (Buchmann， 等， 2002).


淡水白点虫生命周期是 温度的从属者，因此更温暖的水温寄生动物生命周期的持续时间越短。 在12 °C，分裂体要孵化的期间是9天，被附上的寄生的阶段有10-12天的持续时间。 这方法在12 °C 时应该持续的每日处理至少3 周。 应该要小心的是当过氧化氢不小心的溢出可能有直接对人皮肤的不利影响。


过氧化氢处理其他像是海水型白点虫体外寄身虫的有效性及安全性测试 的研究被完全保证(蒙哥马利布洛克，D。 et al.，2000) . 不过，这次处理被认為高度的实验性，因此它不能被推荐。 当使用过氧化氢时，副作用和存活率可能不能证明是可接受的。 当使用35%或更高的剂量时需要穿戴防护衣和安全眼镜。当用过氧化氢处理，因為当温度升高时，它变得更有毒时，水温应该被仔细监控。 在这点，这种实验方法的安全有效的正确剂量与持续时间还没被确立。

这往后的 部分系列将包括一些对抗海水白点虫 的选择. 这些将包括使用甲醛和孔雀石绿，紫外线灯，淡水浴，hypersalinity高比重和沙搬迁方法。 第四部也将涵盖 使用生物清洁工， 抗疟疾药物，升水温，还有所谓\" 珊瑚安全的药物和使用的草药治疗(即 蒜) 控制 海水白点虫 .
第四章


在第叁章中我们解说了几个以往用於根绝海水型白点病而且效果不错的治疗方法及一些以控制海水型白点虫為主的实验性治疗。在第四章里将会接着提供一些替代性的治疗方法用来抵抗海水型白点虫造成的感染

替代性治疗

关於海水白点病的治疗有狠多种说法(传言)，但其效果充其量也不显着，甚至可说是微乎其微，不管如何使用，在杀死虫体的效力上仍有其极限，如以含铜的药物治疗或是在比重(盐度)上做调整，终究会对无脊椎动物、微藻群、微生物群造成伤害。这就是在软体缸治疗海水型白点虫感染最大的难处。

除上述所提的两种方法以外，其它的治疗方法也都有其缺点。替代的治疗有福马林、孔雀绿、紫外线杀菌灯、淡水浴、高比重(高盐度)、移去底沙(病床?)、生物清洁(防治)法、草本治疗(药草? 中药?)、抗疟疾药物、提高温度，(还有所谓的珊瑚安全的治疗法)。替代治疗也可以组合搭配使用，举例来说，在喂食前打开紫外线杀菌灯并且将饵料先浸泡过大蒜汁或大蒜精。

福马林和孔雀绿

在治疗海水白点病时，甲醛和孔雀绿可以单一使用或是混合使用，需要注意的是这两种药物对硝化菌和鱼类都具有毒性，尤其是小型鱼。同时这两种药物目前已被证实会提升血液中可体松(皮质醇)的浓度，进一步抑制人体的免疫力，对人体健康有不良的影响。甲醛和孔雀绿无论对人还是对动物来说都是危险的。

液态甲醛浓度约37%~40%时即是浓度100%的福马林。(Bartelme, 1999)
福马林在水族及海洋生物养殖上的有效应用(Herwig, 1978. Moe, 1982. Rasheed, 1989)福马林并不能发挥应有的效力，因為多数的营养体被埋藏的太深，导致在不伤及鱼支的指示剂量下，化学药品无法(狠难)对虫体產生影响，无论甲醛和孔雀绿混合使用与否，对海水白点病也只有部份的效果

紫外线杀菌灯

紫外线杀菌灯有助於预防系统缸之间的感染扩散，在系统缸管线之间设置紫外线杀菌灯可以在theronts掠食体散布到下个一鱼缸之前杀除，但是这种紫外线减少感染机会的作法在单一鱼缸中却不是这麼有效，因為附在鱼体身上的theronts掠食体会自动脱离鱼体，落到底部再进行细胞增殖，这段时期并不会随水流通过紫外线杀菌灯，所以仍然有机会感染到其它鱼支，这意味着寄身虫将在缸中重覆它的生理周期(Gratzek, et al., 1983)Gratzek的研究是应用在淡水\"ick\" Ichthyophthirius multifiliis淡水型白点虫中，但在海水型白点虫也适用

淡水浴

淡水浴对大部分海水型白点虫的治疗几乎无效果(Burgess, 1992)
渗透压改变对宿主的上皮和表层黏液造成的冲击(Colorni, 1985)
大多数经过低比重治疗的宿主，包括淡水浴，其疗程维持18个小时后，身上的trophonts营养体仍然存活在原来的部位上，在虫体经过一段时间重新适应海水后，就继续它们的生理周期(Colorni, 1985)


注意到上面说的是”大部份”而不是全部trophonts营养体。Trophonts营养体把自已完全的植入表皮底下的上皮部位，这令trophonts营养体不受淡水浴影响。当 trophonts营养体成长到一定大小时，它们通常会来到表皮，这也是他们成為一个白点并可用肉眼观察的时候，也只有在这个时候，曝露在外的 trophonts营养体才有可能受到淡水浴的影响,但幸存下来的营养体可以完成牠们的生命周期，造成这种方法最多只能发挥部份的影响.


淡水浴会导致渗透压冲击，典型就如鱼只在捕捉的过程中暴露再空气中,或者触碰鱼体,转换环境,都会造成鱼支紧迫。淡水浴不能被当成治疗海水型白点虫的唯一手段，因為会让鱼支產生高度紧迫并带来不良后果，必需搭配其它治疗方法，成功达到阻断寄身虫的生命周期。

高比重

高比重(盐度高於一般的海水),曾被研究出来做為海水型白点病的治疗法。
盐度為45ppt时是最适当的条件，对鱼支压力最小而且对纤毛虫也能适当的控制(Huff & Burns, 1981)。不幸的是高比重法被认為对鱼只的伤害大於寄身虫


移除底沙法

移除底沙法的构成就是每隔叁天总共分成四次移出全部的底沙，此法的用意当tomonts分裂体落在底沙中或底质中，在尚未孵化前就将其移出，但这个方法效果也并不大，因為我们无法完全的移除 tomonts分裂体。Tomonts分裂体不单只是附着於底沙或底质中，他们也会在其它坚硬的表面如巖石、玻璃和设备上形成孢囊。Tomonts分裂体同时也会附着在贝类或无脊椎动物的外壳(甲壳)上。


减轻紧迫的诀窍

在开始治疗的24小时前，先準备好一大桶人工海水，并确定这些海水足够让你在治疗过程中进行更换。经过至少24小时搅拌和曝气的人工海水，较能完全溶解且化学反应也较稳定。没经过妥善处理的人工海水会令鱼鳃发炎，紧迫。

把治疗的鱼缸从吵杂的场所移到安静的地方，避免鱼支受到打扰惊吓，并放置一些PVC水管在鱼缸中供鱼支躲藏，另一个為鱼支减压的方法就是降低鱼支对鱼缸周边环境的警觉性 (Bartelme, 2000b)。将鱼缸的背部、底部、两侧遮盖住可以降低鱼支对周边环境的警觉性并把灯光保持在昏暗的亮度、

生物清洁防治法

鱼类通常会把海水型白点病交由生物清洁工处理，像是清洁虾或是隆头鱼科。
这些清洁工本能就具有清洁鱼体的行為，但我们不能认定这些清洁工一定会吃trophonts营养体，或是大量食用trophonts营养体来对治癒海水型白点病有帮助，清洁工在工作的同时也可能遭受到感染。(见底沙移除法 #Tomonts同时也会附着在贝类或无脊椎动物的外壳。)

Alexandra Grutter的研究中发现在常见的清洁鱼或鱼医生的胃部内容物中含有gnathiid isopods等足目甲壳生物、scales介壳虫、copepods橈足类和non-parasitic copepods非寄身性的橈足类.(Grutter, 2000)海水型白点虫并未在胃内容物发现表示牠并非是饮食的一部分.

抗疟疾药物

几种抗疟疾药物以某一程度的成功的被使用在对抗海水型白点虫,这些药物包含...如磷酸氯酸奎寧、盐酸金鸡纳、盐酸奎纳克林(阿的平Atabrine)。但不局限於这几种,在施行抗疟疾药物治疗前需要先做生物监定(评估)，因為在不同的环境中，其效力变化是非常剧烈的。

根据我的经验，治疗疟疾用的盐酸奎纳克林只有部分的效果且不确定的.这个治疗会导致鱼支的体色转黄或暗沉，在经过一个星期的治疗后，鱼鰭会开始破损。一般使用奎纳克林建议的疗程是十天，但十天的疗程对杀除海水型白点虫来说并不足够。

提高水温

水温调整或升温到华氏86度(摄氏30 度)对治疗ick Ichthyophthirius multifiliis淡水型白点虫有不错的效果，但是对海水型白点虫来说，华氏86度(摄氏30度)正是繁殖的理想温度，所以提高水温到华氏86度(摄氏30度)无法杀死寄身虫(Noga, 2000)

小幅度的提高水温目前已被证实会加速海水型白点虫的生命周期，事实上，parasite的生命周期跟温度有关，加速白点虫的生命周期可能对鱼支没有帮助。提高水温会改变鱼支血液的PH值，这会让原本就染病虚弱的鱼支倍感压力(Bartelme, 2000a. McDonald & Milligan, 1992)。如果水温本来就不低，就可不用加以调整，如果需要调整，则慢慢的升/降温，避免温度剧烈变化

Reef safe治疗法

尽管形形色色的厂商宣称產品有效,但我还没见过任何所谓的珊瑚安全的药物能在治疗海水型白点虫上有一贯性的作用,当这些治疗显露出作用可能是取决於诊\断错误或者鱼类自体免疫系统產生部份或者是全面的免疫(Burgess, 1992)。
至於这些Reef safe药物对无脊椎动物及可行光合作用的无脊椎动物有多安全也是值得怀疑的,。以我来看，在鱼重病时使用Reef safe药物只会浪费更多宝贵的时间。安全有效且能用於食用鱼的化学治疗方法仍需期待被研发出来(Colorni & Burgess, 1997)

草本治疗(药草? 中药?) 例：大蒜

这几年来草本治疗已成為抵御海水型白点虫及ich常用的手段，特别是大蒜最常见，平时在喂食之前先将食材浸泡大蒜精(汁液)并持续几周来对抗淡水型白点虫，不幸的是目前的证据显示大蒜对治疗海水型白点虫的效果不彰或没有效果，能被用於治疗白点虫至今也算是一件有趣的事(Bartelme, 2003a. Cortes-Jorge, 2000)。
(蒜精疗法)在一些案例中看来是有效的，特别是在感染较轻微的情况下．在感染较严重的情况下则有时无效．无论如何，的确是有一些证据显示蒜精可以作為一些其他种类寄身虫感染的治疗方式．

曾有研究报告指出大蒜(葱属植物)的抽出物消灭车轮虫(Madsen et al. 2000)
同时大蒜汁也曾被证明可以在15小时内让浮游期的淡水型白点虫死亡。淡水型白点虫為造成感染的淡水寄身虫通常被称為ick.
萃取物可用过压碎新鲜的蒜瓣取得。要杀死水中theronts浮游体需要添加的剂量是62.5 mg/L，如果可以杀死5成以上的theronts浮游体则此浓度就被视為是有效的(Buchmann, et al., 2002)。
剂量增加到570 mg/L则可以完全杀死在tomocyst stage孢囊体阶段的Ichthyophthirius multifiliis淡水白点虫。
使用allium satiyum大蒜的测试结果显示allium satiyum没有办法杀死在鱼支皮肤中的trophonts营养体(Buchmann et al., 2002)
随着大蒜的种类、用法不同，其化合物的变异也狠大，把它加入水中，是不切实际的作法(Buchmann, et al., 2002)

宿主对於海水型白点虫在不同部份的反应机制尚未明了(Colorni & Burgess, 1997)
目前已经证实大蒜采取口服，让鱼支食用的话，可以掩蔽鱼支对白点虫產生的化学吸引，进一步阻碍寄身虫的寄生能力(Cortes-Jorge, 2000)。
鱼体的化学吸引力仍需要进一步研究调查(Colorni & Burgess, 1997)

在第五章同时也是此系列的最后一章将包含鱼类发展全面或部分免疫的能力还有海水型白点虫低盐度的变形种类，还有硬骨鱼类适应低比重条件的能力，并且将试着增进(改善)transfer method治疗法，同时也会提到施行transfer method的困难点，另外还有一种新的、混合型的海水型白点虫治疗法，其中提到以四个阶段改善治疗原理还有一些减轻鱼压力的方法。




第五章


我们在第四章中提到一些对抗海水型白点虫的替代性治疗法，在第五章里将着重於鱼类对海水型白点虫发展全面或部分免疫，parasite在低盐度环境下的变形种类，硬骨鱼类在低比重环境下的适应能力，改善transfer method治疗法及克服transfer method治疗法的缺点。另外此章也会提到transfer method治疗法的变化，其中改变的地方有”减少鱼支压力”和”提高治疗鱼支的存活率”，将以四个步骤来提升\"hypo-trans\"的治疗效果及一些减压的秘诀

(鱼类对海水型白点虫的)全面或部分免疫

受到海水型白点虫及saltwater ich感染后痊癒的鱼支会对该病產生某一程度的免疫力并可持续六个月之久(Burgess & Mathews, 1995b)。
有些鱼类对疾病不会自我保护或產生免疫。当鱼类在免疫时，即使parasite在这时出现，免疫力可使得他们不会受到parasite危害，虽然狠多鱼类无法做到完全的自我保护，但还是可以承受较轻微的感染。(Colorni & Burgess, 1997)。
这样或许可以解释如果没有完全杀死系统中的parasite，日后病情还是有可能再度爆发的原因。压力会降低鱼支的免疫力，使得parasite的数目增加，最后导致病情再度爆发(Colorni & Burgess, 1997)。
全面或部分免疫也可以解释為什麼那些效果不明确的治疗方法有时会被当成是有效的。

就免疫学上来说，鱼类对海水型白点虫產生某一程度的免疫力，就如同人类接受疫苗预防接种產生抗体般合理，但是针对海水型白点虫的疫苗仍未研究出来。

另一个可行的方法就是使用生物防治(调幅)器如Beta 1,3D glucan (Bartelme, 2003c)。Beta glucan目前已被证实可以增进免疫系统对细菌感染、病毒感染、菌类感染、parasitic pathogens的整体防卫机制。当改為鱼类口服时，可以达到模拟免疫系统的功能。但是目前还没有经过临床实验过，特别是针对海水型白点病，但免疫模拟(Beta glucan)还是值得进一步研究。

鱼类在低比重环境下的适应能力硬骨鱼类的耐盐性比其它鱼种来得更好(Wu & Woo, 1983)

研究显示目前狠多珊瑚礁鱼类被归类為耐盐性较低，由此可突显出耐盐性高的能力(Wu & Woo, 1983. Woo & Chung, 1995)。
生理上的评估显示当生态环境盐度变化较小时，有些种类可能生理上对盐度变化的接受范围反而较大，这证明了对物种盐度变化接受度的界定应该排除其环境因素，也就是说应以其生理做判断，而不是依其栖息地做考量(Woo & Chung, 1995)。

古时代的海水盐度(404mm)远比目前(1123mm)所发现的来的低的多 (Spaargaren, 1979). 非常有可能以后的珊瑚礁居住者会演化进而适应一个比现在海水盐度远低的多的环境(Moyle, & Cech, 1982). 这狠有可能可以解释為什麼硬骨鱼类能够轻易的适应低盐度的环境.

低盐度环境下的白点虫变异种
就目前而言, 转移治疗法是除了铜药治疗法外唯一能够有效并持续性的对付低盐度海水型白点虫变异种的方式. 转移治疗法最大的问题在於持续处理(捞捕, 换缸)时所造成的伤害以及加诸在鱼只身上的压力. 如果能将转移治疗法加以改进, 进而降低鱼只受伤的危险并降低加附在鱼只身上的压力, 那这样的治疗方式将更安全并能够提升鱼只的存活率, 问题是这该如何完成?



改善转移治疗法所面临的挑战
当鱼只受到压力紧迫后, Plasma catecholamine concentrations 的浓度会升高, 并维持一段时间(Mazeaud, et, al., 1977. Mazeaud & Mazeaud, 1981). Hydromineral 或 osmotic disturbance 是鱼只受到压力后必有的產物(Bartelme, 2000a. McDonald & Milligan, 1997). 压力会造成海水鱼只脱水以及influx of ions的状况(Folmar & Dickhoff, 1980. Mazeaud, et. al., 1977). The initial severity of a stressor such as handling and transfer determines the degree of osmotic disturbance rather than the duration of that stress (McDonald & Milligan, 1997).



压力会影响巨噬细胞的產生以及其他免疫系统的功能(Bartelme, 2003c). 当免疫功能受到抑制时, 鱼只也变的容易受到疾病的感染(Pickering & Pottinger, 1989. Rottmann, 1992). 在经过压力的状况下, 这些疾病问题可能被延迟一到叁周. 这可能导致鱼只的死亡, 也就是\"Delayed Mortality Syndrome.\"(延迟死亡癥候群) (Noga, 2000). 以网子捕鱼以及将鱼只移离水面, 对鱼只会造成高度的紧迫(Bartelme, 2003b). 如果鱼只在剧烈运\动后, 离开水面30 秒鐘, 其致命率以及血液中的乳酸浓度将大幅增高(Ferguson & Tufts, 1992. Wood, et. al., 1983).



克服转移治疗法所面临的困难.
降低鱼只体内液体与周遭环境海水的差异性可以减缓水与离子的纷乱(Wedemeyer, 1996).原先被用来调节透压的能量可以被保存下来并供其他正常的生理功能使用, 如体内平衡. 在转移治疗法中, 配合使用低盐度的海水, 能够降低因為转移及捕捉所造成的鱼只紧迫.

对鱼只施行预先的免疫系统刺激兴奋剂, 如 Beta 1,3D glucan, 将会帮助牠们加速巨噬细胞的產出, 以及提升主要的防御免疫系统(Bartelme, 2003c). 口服性的 Beta glucan 能够刺激免疫系统, 帮助鱼只克服或避免感染. 动物实验研究证明服用多剂量的Beta glucan 对健康是没有危害的. 推荐剂量為每天一剂 4mg/lb.

在捕捉鱼的时候, 用网子捞捕及追逐鱼只通常都是造成紧迫或伤害的主因(Bartelme, 2003b). 透明的塑胶袋或是塑胶容器因為不容易被鱼只所看见, 所以可以在捕捉或移动鱼只时用来取代网子(Spotte, 1993 & 1979). 因為鱼只无法看见透明的塑胶袋或容器, 所以捕捉鱼只所花的时间会更少且对鱼只来说是更安全的. 鱼只也较不会因為捕捉的追逐精疲力尽. 将鱼只移离其所赖以生存的水中, 不仅会对鱼只造成高度的紧迫, 通常亦会造成伤害(Ferguson & Tufts, 1992. Flagg & Harrell, 1990). 以塑胶袋或容器所捕获的鱼只在搬运\或处理的过程中是不需要离开水中的.

新类型的转移治疗法
我所提议的新的或是混合的方法, 是结合两个被验证有效的治疗法, 混合使用来完全灭除海水型白点虫: 低盐度治疗法以及搬移法. 合称為低盐度转移治疗法. 低盐度转移治疗法是将鱼只在两个低盐度鱼缸中, 每隔叁天的时间就做一次搬移的动作, 持续的做四次搬移. 在每一次搬移之后, 没有鱼的缸子就要被清理乾凈并将所有的水放掉乾燥.

放置鱼只所使用的检疫缸的水质要与原来鱼缸(主缸)中的相同. 当鱼只搬移到检疫缸后, 使用预先调整好的淡水, 开始四阶段的换水步骤, 让鱼只渐渐适应低盐度的环境. 每次换水时, 需要密切的注意水温, 不要有太大的温度变化. 从鱼只搬移到治疗缸的第一天开始, 每天换两次的水, 持续两天. 在每一次换水时, 降低盐度约 5ppt, 一直到盐度达到 13-14 ppt 左右為止.

在稀释的海水中, KH 跟 pH 都有降低的趋势. 每天都要检测 KH 跟 pH, 在需要的状况下添加缓冲剂来维持 pH 在 8.1 到 8.3 之间. 在治疗过程中, 少量喂食以保持水质.

低盐度治疗法已经被证明是一种对於治疗海水性白点虫具有相当效应的方式. 但是这种治疗法对於海水性白点虫的低盐度变异种却是无效的. 对於低盐度转移治疗法而言, 低盐度是用来降低鱼只的压力紧迫状况, 以及缓和随后因為重復的捕捉, 移动所造成的渗透压调节上的混乱. 乾燥才是实际上摧毁每一次鱼只搬移后所残留下的海水型白点虫的 tomonts 的主要因素. 在不使用严苛或危险的药物治疗法(如铜)的状况下, 不论海水型白点虫对盐度的容忍程度范围為何, 这样的新方法都是有效用的.

新转移治疗法对於降低鱼只承受的压力并进而增加受治疗鱼只的存活率所做的改变
1. 在开始低盐度转移治疗法的 24 小时前, 对鱼只进行 Beta 1,3D glucan 的添加. 这将可以在开始进行治疗前, 激增并活化鱼只的生化防御机能, 并能够将低可能的伤害.

2. 处理及捕捉鱼只时使用降低鱼只紧迫, 以及减少鱼只伤害的方式. 并且鱼只在处理及搬运\过程中不会被迫离开水中.

3. 盐度為 13 到 14 ppt 之间的海水, 可以用来降低鱼只体液与外解水份间的渗透压.

改善低盐度搬移治疗法的四个步骤

在搬移鱼只的24小时前, 先对鱼只使用 Beta 1, 3D glucan 以刺激鱼只的免疫能力并增强其生化防御系统. 此后, 在进行低盐度移转治疗法的期间, 持续每天的在饲料中添加 Beta glucan

捕捉及移动鱼只时, 要使用透明的塑胶袋或是塑胶容器. 搬移的过程中要保持鱼只在水中, 不要让鱼只暴露在空气之中. 对於海水鱼来说, 治疗缸里的低盐度作法, 是用来中和(降低渗透压, 避免不好的物质进入鱼只体内)鱼只在处理, 捕捉, 以及转移时所產生的压力所產生的 hydromineral or osmotic disturbance. 相反的, 对於淡水鱼来说, 添加盐到淡水中也是同样的效果(Wedemeyer, 1996).

其他降低鱼只紧迫的方法
在开始治疗的 24 小时前, 就将本次治疗所需的海水量调配完成. 调配的水量需要能够满足在整个治疗过程中换水所需的量. 使用前 24 小时就已经调配好并经过曝气的海水, 会是较完整溶解, 并且是在化学变化上较為稳定. 未经过曝气或混何不完全的海水会刺激鱼只纤弱的鳃组织, 且增加鱼只的紧迫.

将治疗检疫缸放置在远离外界干扰(动作, 噪音)的安静环境. 并在缸中放入许多的 PVC 管来作為鱼只躲藏的地方. 另外一个降低鱼只压力的方式, 是降低鱼只对於缸中或缸外发生事情的意识能力(Bartelme, 2000b). 把治疗缸的背部, 底部, 以及缸的四周涂上较深的顏色, 并使用昏暗的灯光, 将能够降低鱼只对於环境变化的感受.

当鱼只的粘膜或皮肤的保护层收到伤害的时候, 可添加 Pro Tech Coat Marine 或其他聚合物(聚乙烯?咯烷酮) 来充当暂时的缓冲屏障. 这可以帮助缓和鱼只在被捕捉或移转时所受到的压力(Carmicheal and Tomasso, 1988). 此外使用生化过滤垫如 Poly Bio Marine 所生產的Poly Filter 亦可用来降低水中的不良杂质, 如在治疗缸中所可能累积的氨.

总结:
对於海水型白点虫的生命周期, 其感染模式以及治疗方式有更多的了解, 在实质上有效的降低了白点虫对於养殖业者以及海水鱼玩家所產生的威胁. 海水型白点虫对於新环境的适应能力与日俱增, 这也使得在白点虫的防治上需要有创新的发展. 不断的投入发展具有实用性, 且有效的治疗处理方式在海水型白点虫的控制上是不可或缺的. 当我们对於白点虫的知识与了解日渐增加的时候, 对於控制海水型白点虫所產生的损伤, 也将有更新的局面出现.


海水鱼疾病中的白点病大概是受到最多讨论的疾病吧,因為牠狠容易被人类的眼睛发现,其他看不到的东西,大家都只能猜,然而网路中以讹传讹的资讯却非常多,想要针对白点病建立一个好的防御策略,我认為就是需要完整的去了解病原体的种类,生命周期,还有各种防御的方法优缺点.....本文的主要重点是说明铜治疗法及HYPO疗法也许是最具优势的方法,不过在一些区域性特有种的白点虫可以适应低比重环境的情况下,后者在某些情况下仍会失去效果,早再两年多以前我已经在一个鱼友家发现第一个低比重白点虫的案例,后期又陆续在水族馆及本人的实验缸发现.....

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